Bab i
pendahuluan
Kasus infeksi
penyakit (infeksi nosokomial) di rumah sakit (RS) masih kerap terjadi
diIndonesia. Berdasarkan riset yang dilakukan di 11 RS di Jakarta menunjukkan
terdapat 9,8% pasien rawat inap terserang infeksi baru
terkait pelayanan kesehatan. Infeksi nosokomial adalah infeksi
silang yang terjadi pada perawat atau pasien saat dilakukan perawatan di
RS.
Beberapa contoh yang sering terjadi adalah:
1.
Infeksi luka bedah,
2.
Infeksi saluran kemih, dan
3.
Saluran pernapasan bagian bawah (pneumonia).
Sarana
pelayanan kesehatan dituntut untuk mengatasi problem tersebut. Dalam standar
akreditasi rumah sakit versi KARS 2012 menekankan adanya pengendalian infeksi
dalam rumah sakit sebagai salah satu standar. Pembentukan tim PPI merupakan
yang wajib di lakukan rumah sakit. Dalam kaitanya dengan hal tersebut, PPI bertanggung
jawab terhadap unit CSSD atau yang sejenis dalam hal pengendalian Sterilisasi
alat. Selain hal tersebut PPI juga bertanggung jawab terhadap penurunan
kejadian infeksi nosokomial. Meihat realitas tersebut, maka wajib hukumnya bagi
tenaga kesehatan memiliki pengetahuan yang tepat terkait masalah Sterilisasi
dan Disinfeksi.
Bab ii
Pembahasan
A.
Disinfeksi dan Sterilisasi
flexible endoscopy
Proses Sterilisasi dan Disinfeksi
pada peralatan medis berbeda-beda sesuai dengan tingkat risikonya. Peralatan
medis dikategorikan dalam tiga klasifikasi yaitu berisiko tinggi (critical),
menengah (semi-critical), dan rendah (non-critical). Peralatan
medis yang berisiko tinggi merupakan peralatan yang kontak langsung dengan
jaringan atau darah sehingga membutuhkan keadaan steril melalui proses Sterilisasi.
Peralatan medis yang berisiko menengah
merupakan peralatan yang kontak dengan membran mukosa atau kulit yang tidak
intak dan membutuhkan teknik Disinfeksi tingkat tinggi. Peralatan
yang berisiko rendah merupakan peralatan yang hanya kontak dengan kulit yang
utuh sehingga cukup dilakukan teknik Disinfeksi tingkat rendah.
Berdasarkan risiko tersebut, Endoskopi saluran cerna termasuk
dalam peralatan medis dengan risiko menengah sehingga membutuhkan teknik Disinfeksi
tingkat tinggi (Cotton dan Williams, 2008; Spicer, 2008).
Proses Disinfeksi tingkat tinggi
Endoskopi
saluran cerna dibedakan menjadi tiga tahap. Ketiga tahap tersebut yaitu: 1)
sebelum proses, meliputi pencucian manual; 2) proses, berupa teknik Disinfeksi
tingkat tinggi dan pembilasan; 3) setelah proses, berupa pengeringan dan
penyimpanan (Spaun et al., 2010).
1) Pencucian
Pencucian secara manual dilakukan pada
permukaan bagian commit to user dalam dan bagian luar. Mula-mula Endoskopi
saluran cerna direndam dan dibilas untuk menghilangkan kotoran, darah, maupun
jaringan yang menempel. Proses pencucian meliputi menyikat bagian dalam dan
membilas dengan air dan deterjen atau pembersih yang mengandung enzim.
Pencucian merupakan langkah utama sebelum Disinfeksi secara manual maupun
otomatis. Penyikatan Endoskopi saluran cerna dilakukan
menggunakan kain lembut, spon, atau sikat sampai tidak terdapat sisa kotoran
pada sikat (Rutala dan Weber, 2004; Greenwald, 2007).
2) Disinfeksi Tingkat Tinggi
Endoskopi saluran cerna direndam dalam cairan disinfektan untuk proses Disinfeksi
tingkat tinggi dalam waktu tertentu. Semua bagian Endoskopi dipastikan
harus terpapar dengan cairan disinfektan. Menurut Food and Drug
Administration (FDA), disinfektan yang bisa digunakan untuk Endoskopi
saluran cerna antara lain glutaraldehid, glutaraldehid dengan fenol,
orto-phthalaldehid, hidrogen peroksida, asam parasetik, dan penggunaan hidrogen
peroksida dan asam parasetik sekaligus (Food and Drug Administration,
2003).
Glutaraldehid dengan konsentrasi lebih
dari 2,4% merupakan disinfektan yang paling banyak digunakan. Glutaraldehid
digunakan pada suhu 25oC dengan waktu perendaman 45 menit. Beberapa prosedur
menyebutkan penggunaan glutaraldehid dapat dilakukan selama 20 menit pada suhu
20oC (Greenwald, 2007).
3) Pembilasan
Endoskopi saluran cerna dibilas dengan air steril atau air yang telah melalui
proses filtrasi menggunakan filter dengan ukuran 0,2 µm. Kemudian dilanjutkan
dengan pembilasan menggunakan 70-90% etil atau isopropil alkohol. Pembilasan
dilakukan untuk menghilangkan cairan disinfektan pada Endoskopi saluran cerna
dan mengurangi transmisi melalui air (Rutala dan Weber, 2004; Greenwald, 2007).
4) Pengeringan
Endoskopi saluran cerna dikeringkan dengan udara bertekanan setelah diSterilisasi
dan sebelum disimpan. Pengeringan merupakan salah satu cara untuk mencegah
transmisi penyakit melalui air akibat adanya air yang menggenang di Endoskopi
saluran cerna (Rutala dan Weber, 2004; Greenwald, 2007).
5) Penyimpanan
Endoskopi saluran cerna disimpan dalam lemari yang terjaga dari kontaminasi. Endoskopi
saluran cerna digantung dengan posisi vertikal untuk membantu proses
pengeringan (Rutala dan Weber, 2004; Greenwald, 2007).
Endoskopi saluran cerna harus dalam keadaan steril apabila digunakan dalam proses
operasi, meskipun secara umum Endoskopi saluran cerna hanya
membutuhkan teknik Disinfeksi tingkat tinggi.
Untuk mencapai keadaan steril
diperlukan prosedur tambahan dalam proses Disinfeksi tingkat tinggi Endoskopi
saluran cerna. Setelah dilakukan Disinfeksi tingkat tinggi, Endoskopi
saluran cerna dikirim ke bagian Sterilisasi alat operasi untuk
dilakukan proses Sterilisasi. Endoskopi saluran cerna yang telah
diSterilisasi
kemudian diletakkan dalam kontainer steril tertutup dan dibawa ke ruang
operasi. Peralatan aksesoris seperti botol air dan tabung harus melalui proses
autoklaf terlebih dahulu sebelum dikirim ke ruang operasi (Spaun et al., 2010).
Faktor yang Mempengaruhi Efektivitas Disinfeksi Tingkat Tinggi Endoskopi Saluran Cerna
Menurut Association for
Professionals in Infection Control and Epidemiology (APIC), infeksi eksogen
di Endoskopi
saluran cerna berkaitan dengan proses Disinfeksi tingkat tinggi (Association
for Professionals in Infection Control and Epidemiology, 2011). Hal ini
dipengaruhi juga oleh keterampilan petugas (Pineau et al., 2008). Beberapa
faktor yang mempengaruhi efektivitas Disinfeksi tingkat tinggi Endoskopi
saluran cerna adalah sebagai berikut:
1)
Pemilihan Metode Disinfeksi Tingkat Tinggi
Pemilihan metode Disinfeksi tingkat tinggi
dengan mesin otomatis dapat mengurangi kemungkinan terjadinya transmisi hingga
11% keluhan dibandingkan dengan metode Disinfeksi tingkat tinggi secara
manual yaitu 67% atau semi-otomatis yaitu 60%. Hal ini dikarenakan mesin
otomatis memiliki validasi untuk volume dan tekanan air, suhu, pH, waktu
paparan dan, dosis disinfektan, sedangkan metode manual tidak memiliki standar
yang pasti (Zuhlsdorf et al., 2002). Penggunaan mesin otomatis juga tetap dapat
menjadi masalah apabila proses awal secara mekanik seperti preDisinfeksi,
pencucian, pembilasan, maupun pemasangan dan pelepasan alat tidak
sesuaiprosedur (Martiny et al., 2004).
2)
Teknik Pencucian Manual
Pencucian merupakan cara efektif untuk
mengurangi mikroorganisme. Teknik pencucian yang tidak menyeluruh dapat menjadi
penyebab transmisi penyakit, misalnya tidak membersihkan tabung bagian dalam,
tanpa deterjen, tidak diulang hingga 2 atau 3 kali, tidak memastikan bahwa semua
bagian Endoskopi saluran cerna terendam dalam deterjen, atau tidak
mengalirkan deterjen ke dalam lumen (Rutala dan Weber, 2004; Barbosa et al.,
2010).
3)
Pemilihan dan Penggunaan Disinfektan
Pemilihan disinfektan yang digunakan
untuk proses Disinfeksi tingkat tinggi sangat mempengaruhi kondisi Endoskopi
saluran cerna. Setiap unit memiliki kebijakan untuk menentukan disinfektan yang
akan digunakan. Setiap disinfektan tersebut memiliki kelebihan dan kekurangan
masing-masing.
Selain pemilihan disinfektan yang
digunakan, teknik yang diterapkan dalam proses Disinfeksi tingkat tinggi
juga mempengaruhi efektivitas Disinfeksi tingkat tinggi. Cara
penggunaan disinfektan yang dapat menyebabkan proses Disinfeksi tingkat tinggi
menjadi tidak efektif antara lain tidak memastikan bahwa semua bagian Endoskopi
saluran cerna terendam disinfektan dan waktu perendaman yang terlalu singkat
(Barbosa et al., 2010).
4)
Proses Pembilasan
Hanya mencuci bagian luar dan tidak
membilas bagian dalam menjadi salah satu penyebab proses Disinfeksi tingkat tinggi
Endoskopi
saluran cerna menjadi tidak efektif (Barbosa et al., 2010). Air yang digunakan
untuk membilas dalam metode Disinfeksi tingkat tinggi mesin
otomatis juga dapat menjadi masalah tersendiri. Air yang digunakan seperti air
kran merupakan air yang tidak bebas kuman. Air tersebut dapat menjadi media
pertumbuhan bakteri sehingga menyebabkan kontaminasi ulang pada Endoskopi
saluran cerna (MacKay et al., 2002).
5)
Prosedur Pengeringan
Proses pengeringan dapat mempengaruhi
efektivitas Disinfeksi tingkat tinggi Endoskopi saluran cerna. Penggunaan
bahan pengeringan maupun cara pengeringan hanya mengeringkan bagian luar dan
tidak menggunakan udara bertekanan menjadi penyebab proses Disinfeksi tingkat tinggi
menjadi tidak efektif (Barbosa et al., 2010).
6)
Teknik Penyimpanan
Menurut Czech Hygiene Authorities,
Endoskopi
saluran cerna yang telah disimpan selama 12 jam harus dilakukan proses Disinfeksi
tingkat tinggi ulang (Czech Hygiene Authorities, 1999). Kondisi almari
yang tidak kering, tidak bersih, dan tidak didesain dengan ventilasi khusus,
maupun peletakan Endoskopi saluran cerna tidak dalam keadaan vertikal dapat
menjadi penyebab lain proses Disinfeksi tingkat tinggi menjadi
tidak efektif (Pineau et al., 2008).
7)
Pengetahuan dan Keterampilan Petugas Endoskopi
Saluran Cerna
Petugas yang melakukan tindakan dengan Endoskopi
saluran cerna maupun melakukan proses Disinfeksi tingkat tinggi harus
memiliki kompetensi dan pengetahuan mengenai penggunaan bahan kimia terkait
biologis, kimia, dan lingkungan. Setiap petugas yang melakukan tindakan dengan Endoskopi
saluran cerna hendaknya memakai peralatan sebagai proteksi seperti sarung
tangan, jas lab, penutup mata, dan masker. Petugas yang tidak melakukan
proteksi diri dapat menjadi salah satu jalur transmisi penyakit (Barbosa et
al., 2010).
B.
Disinfeksi Tingkat Tinggi
Disinfeksi merupakan tindakan/upaya untuk mendestruksi atau membunuh mikroba patogen
dalam bentuk vegetatif dan bukan spora bakteri. Metode Disinfeksi dapat
dilakukan dengan memanfaatkan bahan kimia atau secara fisik (Tortora et al.,
2007; Bauman et al., 2011). Berdasarkan
daya hambat terhadap mikroorganisme, Disinfeksi dibedakan menjadi tiga
yaitu Disinfeksi tingkat tinggi, menengah, dan rendah (Spicer, 2008).
Disinfeksi tingkat tinggi adalah suatu proses menghilangkan
semua mikroba dan sebagian spora bakteri.
Cara ini dapat dilakukan dengan pendidihan selama 20 menit atau dengan
penjenuhan dengan jumlah besar disinfektan selama 30 menit misalnya dengan
mengunakan glutaraldehid atau H2O2. Sedangkan Disinfeksi tingkat rendah
Akan
menghilangkan jumlah mikroba sehingga peralatan atau permukaan badan aman untuk
dipegang. Desinfeksi ini dapat dilakukan dengan beberapa macam disinfektan
(Signaterdadie, 2009)
Disinfeksi tidak bisa terpisahkan dari disinfektan. Seringkali seseorang mengalami
kesalahan dalam menggunakan istilah ini. Desinfektan sangat penting bagi rumah
sakit dan klinik. Desinfektan akan membantu mencegah infeksi terhadap pasien
yang berasal dari peralatan maupun dari staf medis yang ada di rumah sakit dan
juga membantu mencegah tertularnya tenaga medis oleh penyakit pasien. Perlu
diperhatikan bahwa desinfektan harus digunakan secara tepat (Imbang, 2009).
a.
Desinfektan tingkat rendah dapat dibagi menjadi 2 golongan :
1.
Golongan pertama
·
Desinfektan yang tidak membunuh virus HIV dan
Hepatitis B.
a.
Klorhexidine (Hibitane, Savlon).
b.
Cetrimide (Cetavlon, Savlon).
c.
Fenol-fenol (Dettol).
Desinfektan golongan ini tidak aman untuk digunakan :
1.
Membersihkan cairan tubuh (darah, feses, urin dan
dahak).
2.
Membersihkan peralatan yang terkena cairan tubuh
misalnya sarung tangan yang terkena darah.
·
Klorheksidine dan cetrimide dapat digunakan sebagai
desinfekan kulit
·
fenol-fenol dapat digunakan untuk membersihkan lantai
dan perabot seperti meja dan almari namun penggunaan air dan sabun sudah
dianggap memadai.
2.
Golongan kedua
·
Desinfektan yang membunuh Virus HIV dan Hepatistis B.
1)
Desinfektan yang melepaskan klorin.
Contoh : Natrium hipoklorit
(pemutih, eau de javel), Kloramin (Natrium tosilkloramid, Kloramin T) Natrium
Dikloro isosianurat (NaDDC), Kalsium hipoklorit (soda terklorinasi, bubuk
pemutih)
2)
Desinfektan yang melepaskan Iodine misalnya : Povidone
Iodine (Betadine, Iodine lemah)
3)
Alkohol : Isopropil alkohol, spiritus termetilasi,
etanol.
4)
Aldehid : formaldehid (formalin), glutaraldehid
(cidex).
5)
Golongan lain misalnya : Virkon dan H2O2. (Imbang,
2009)
C. Pembersihan instrumen
Pembersihan instrumen bertujuan untuk menjaga instrumen baik keawetanya
maupun kebersihan alat, sehingga bisa segera di sterilkan. Secara umum
pembersihan instrumen dilakukan dengan pencucian.
Pencucian adalah cara paling efektif untuk menghilangkan sebagian
besar mikroorganisme pada peralatan perlengkapan yang kotor atau yang sudah
digunakan. Baik Sterilisasi maupun Disinfeksi tingkat tinggi menjadi
kurang efektif tanpa proses pencucian sebelumnya. Jika benda-benda yang
terkontaminasi tidak dapat dicuci segera setelah didekontaminasi, bilas
peralatan dengan air untuk mencegah dan menghilangkan bahan-bahan organik, lalu
cuci dengan seksama secepat mungkin. (Uliyah dan hidayah, 2008). Sebelum dilakukan
pemcucian harus dilakukan dekontaminasi terlebih dahulu untuk menjaga keamanan
petugas.
Dekontaminasi adalah langkah pertama dalam menangani peralatan,
perlengkapan, sarung tangan, dan benda–benda lainnya yang terkontaminasi.
Dekontaminasi membuat benda–benda lebih aman untuk ditangani petugas pada saat
dilakukan pembersihan. Untuk perlindungan lebih jauh, pakai sarung tangan karet
yang tebal atau sarung tangan rumah tangga dari latex, jika menangani peralatan
yang sudah digunakan atau kotor (niken, 2009).
Tujuan Dekontaminasi (Uliyah, 2008)
1. Untuk
menurunkan transmisi penyakit dan pencegahan infeksi pada
alat-alat instrumen persalinan yang telah dilakukan pencucian
2. Memusnahkan
semua bentuk kehidupan mikroorganisme patogen termasuk spora, yang mungkin telah
ada pada peralatan kedokteran dan perawatan yang dipakai.
3. Untuk
mencegah penyebaran infeksi melalui peralatan pasien atau permukaan lingkungan.
4. Untuk
membuang kotoran yang tampak.
5. Untuk
membuang kotoran yang tidak terlihat (Mikroorganisme).
6. Untuk menyiapkan
semua permukaan untuk kontak langsung dengan alat pensteril atau desinfektan.
7. Untuk
melindungi personal dan pasien.
Cara-cara Dekontaminasi
1. lakukan
dekontaminasi terhadap alat-alat dengan cara merendamnya dengan larutan
desifektan (klorin 0,5 %) selama 10 menit. Atau cairan enzimatik langkah ini
dapat membunuh virus hepatitis B dan AIDS.
2. Jangan
merendam instrument logam yang berlapis elektron (artinya tidak 100 % baja
tahan gores) meski dalam air biasa selama beberapa jam karena akan berkarat.
3. Setelah
dekontaminasi instrumen harus segera dicuci dengan air dingin untuk
menghilangkan bahan organik sebelum dibersihkan secara menyeluruh.
4. Sekali
instrumen atau benda lainnya telah didekontaminasi maka selanjutnya di proses
dengan aman.
Adapun
langkah langkah pembersihan instrumen selanjutnya adalah:
1. Petugas
menggunakan sarung tangan karet/plastik yang tebal
2. Gosok setiap
permukaan instrumen dengan menggunakan sikat halus yang telah di bubuhi
detergent atau cairan enzymatic.
3. Bilas
dibawah keran air yang mengalir
4. Keringkan
dengan lap atau handuk kering
5. Olesi
instrumen dengan minyak pelumas atau parafin
6. Lakukan
pengecekan instrumen
a.
Jumlah
b.
Kelurusan tiap-tiap rahang/gigi
c.
Keakuratan kunci-kunci
d.
Ketajaman
7. Khusus
alat-alat yang tajam dan halus, lindungi dengan kain kassa
8. Bungkus
instrumen dan beri label sesuai set-nya
D.
sistem Pengemasan
Pengemasan yang dimaksud di sini termasuk material yang
tersedia untuk fasilitas kesehatan yang didisain untuk
membungkus, mengemas dan menampung alat-alat yang pakai ulang untuk Sterilisasi, penyimpanan dan
pemakaian. Tujuan pengemasan adalah untuk berperan terhadap keamanan dan
efektivitas perawatan pasien yang merupakan tanggung jawab utama CSSD. Setelah
alat/instrument dikemas diberi
label/tanda (nama ruangan, tanggal steril, alat yang disterilkan).
Prinsip-prinsip
Pengemasan
Ada tiga prinsip dasar pengemasan:
1. Sterilan harus dapat menyerap dengan baik ke seluruh
permukaan kemasan dan isinya
2. Harus dapat menjaga sterilitas isinya hingga kemasan
dibuka
3. Harus mudah dibuka dan isinya mudah diambil tanpa
menyebabkan kontaminasi
Persyaratan
Bahan Pengemas:
1.
Sesuai dengan Metode Sterilisasi yang dipakai
1. Bahan yang dipakai untuk pengemasan Sterilisasi harus sesuai dengan
proses Sterilisasi yang
dipilih
2. Harus tahan terhadap kondisi fisik, seperti suhu
tinggi, kelembaban, tekanan dan/atau hisapan pada proses Sterilisasi.
3. Udara pada kemasan dan isinya harus bisa keluar
4. Sterilan pada proses uap, EO, atau panas-kering
harus dapat menyerap dengan baik pada seluruh permukaan dan serat semua isi dan
kemasan.
5. Sterilan harus dapat dilepaskan pada akhir siklus Sterilisasi
Sterilisasi Uap.
Bahan kemasan harus memudahkan proses pelepasan
udara dan penyerapan uap yang baik pada kemasan dan isinya. Pada beberapa Sterilisasi uap, terjadi juga proses
penghisapan. Karenanya, bahan kemasan harus memudahkan pelepasan udara secara
total tanpa mengganggu bentuk kemasan dan segelnya, Bahan kemasan juga harus mudah
kering dan memudahkan pengeringan isinya.
Sterilisasi EO.
Bahan kemasan harus memudahkan penyerapan gas dan
uap sterilan yang baik, dan juga siap melepaskan gas dan uap tersebut dari
kemasan dan isinya selama waktu aerasi
Sterilisasi
Panas-Kering.
Bahan kemasan dan isinya harus tahan terhadap suhu
selama waktu yang diperlukan untuk siklus panas-kering tanpa meleleh, terbakar,
atau rusak.
Dapat Menahan Mikroorganisma dan Bakteri
Bahan yang dipakai untuk mengemas harus dapat menjaga sterilitas dan melindungi
isinya yang sudah steril, dari sumber-sumber kontaminasi mikroba mulai dari
saat kemasan dikeluarkan dari mesin Sterilisasi,
sampai kemasan dibuka untuk dipakai. Karenanya, bahan yang dipakai sebaiknya
tidak berbulu, juga dapat menahan masuknya debu dan terserapnya uap (air atau
cairan lainnya).
Kuat dan Tahan Lama
Bahan kemasan harus cukup kuat untuk menampung
isinya selama proses Sterilisasi
dan penanganannya. Harus tahan sobekan dan tusukan, tidak boleh terpengaruh
tingkat atmosfir dan kelembaban udara. Selama penyimpanan sebelum dan sesudah Sterilisasi, bahan kemasan tidak
boleh berkerut, berlubang jika dilipat, kusut, atau melekat satu sama lain jika
ditumpuk, dan segel tidak tidak boleh terlepas.
Mudah digunakan
Bahan harus mudah digunakan untuk membungkus, dan
harus sesuai dengan ukuran dan bentuk alat yang akan dikemas, dan harus
membungkus alat rapat-rapat.
Tidak mengandung Racun.
Bahan kemasan tidak boleh mengandung bahan beracun
dan warna yang bisa menyebabkan reaksi yang tidak diinginkan terhadap pekerja,
atau yang luntur jika terkena sterilan. Sebaliknya, bahan-bahan pakai ulang
yang sudah dilaundry atau kotak kontainer pakai ulang harus bebas dari detergen
bahan pemutih, atau bahan kimia lainnya yang dapat bereaksi dengan uap sehingga
menyebabkan perubahan warna pada instrumen atau menimbulkan perubahan kimia
pada alat di dalam kemasan.
Segel yang baik
Segel sangat penting untuk melindungi isi kemasan
dan menjaga sterilitas. Pembungkus datar dapat disegel dengan indikator tape
atau diikat dengan tali kain. Kantong terbuat dari plastik, kombinasi plastik
dan kertas, atau kertas saja harus disegel dengan segel panas atau tape.
Kantong bersegel harus disegel sesuai instruksi produsen. Kotak kontainer Sterilisasi biasanya disegel dengan
pengunci tahan hancur. Saat membuka kemasan, semua metode segel harus rusak dan
tidak dapat dipakai lagi untuk menghindari kesalahan.
Membuka dengan Mudah dan Aman
Bahan kemasan harus mudah dibuka dengan risiko
kontaminasi yang minimum, misalnya karena alat terjatuh, dan memungkin
perpindahan alat secara aseptik ke area yang steril. Kadang kala pembungkus
datar dipakai sebagai duk. Jika demikian, bahan yang dipakai harus mempunyai
ukuran yang cukup besar untuk menutupi area operasi (drape), harus fleksibel dan menggantung dengan baik dan tidak boleh
menggulung sehingga menyebabkan kontaminasi pada isinya.
Masa Kadaluarsa
Kemasan steril harus dapat menjaga sterilitas isinya
selama masa kadaluarsanya. Karena pada prinsipnya, masa kadaluarsa tidak
bergantung pada waktu melainkan pada kejadian yang dialami oleh kemasan
tersebut.
Tipe-tipe Bahan Kemasan Kertas
Bahan ini hanya untuk sekali pakai. Kebutuhan akan
pemakaian kertas disebabkan karena duk kain dan handuk tidak tentu kapan
kembalinya dari laundry kemungkinan terjadinya berbulu pada kain. Juga ada
keraguan pada kemampuan kain menahan bakteri, sehingga dicari alternatif bahan
pembungkus lainnya.
Kriteria kertas yang dapat dipakai:
1.
Harus tidak
tembus air
2.
Harus
memiliki kekuatan tensile yang tinggi (sangat sukar dirobek)
3.
Harus
merupakan penahan bakteri yang baik
4.
Harus bebas
dari bahan beracun.
Kertas dapat dipakai sebagai bahan kemasan untuk
proses Sterilisasi uap dan EO.
Tipe kertas yang boleh dipakai untuk kemasan Sterilisasi:
1.
Kertas kraft
yang medical grade
2.
Kertas
berlaminasi: terdiri dari tiga lapisan, lapisan kedua mencegah penyerapan uap
terapi berpori untuk udara, sehingga harus dilipat sedemikian rupa agar proses Sterilisasi berlangsung dengan baik.
3.
Kertas
mentega yang non-glaze (7,2 kg/rim) bisa dipakai untuk Sterilisasi uap tetapi mudah robek.
4.
Kertas krep :
menggantung dengan baik dan tidak mudah robek. Bisa dipakai untuk membungkus
sekaligus sebagai area steril (duk).
Tape indikator kimia harus dilekatkan pada setiap
kemasan. Tape ini berubah warna untuk identifikasi kemasan yang sudah melalui
proses Sterilisasi.
Film Plastik
Film plastik tidak dapat menyerap air baik berupa
cairan atau uap, karenanya film plastik tidak dapat dipakai sebagai kemasan
untuk Sterilisasi uap. Kantong
biasanya didisain dengan kertas di salah satu sisinya untuk penetrasi uap. Polyethylene (PE) dapat menyerap EO dan
dapat dipakai sebagai tas plastik dengan disain khusus, tetapi biasanya kantong
plastik untuk EO juga dikombinasikan dengan kertas. Polyvinyl Chloride (PVC) tidak boleh dipakai karena tidak dapat
menyerap EO dengan baik dan menyimpan
gas untuk waktu yang cukup lama. Nylon
atau polyamide juga tidak
direkomendasikan untuk uap dan EO. Ketebalan film plastik biasanya 1-3
milimikron untuk porositas terhadap EO. Film plastik sering dipakai setelah
proses Sterilisasi untuk
menjaga kelembaban dan pelindung terhadap debu.
Kain
(linen)
Linen adalah bahan tradisional untuk membungkus
nampan-nampan operasi. Kelebihannya adalah bisa dipakai ulang, murah, kuat,
pelindung yang cukup yang baik, mudah digunakan, dan sangat baik untuk duk.
Kelemahannya:
1. Bukan penghalang bakteri yang baik dan mudah
menyerap air.
2. Suhu panas menyebabkan mudah robek. Sebaiknya
memakai kain yang baru di laundry
3. Perlu diperiksa jika ada lubang, sobekan, dan
kerusakan lainnya
4. Pembungkus kain harus bahan muslin berkualitas
tinggi dengan spesifikasi 140 thread
count, dan harus dipakai 2 lembar.
5.
Muslin yang
tidak di bleach lebih baik karena 10
% lebih kuat dari muslin yang di bleach.
6. Kain yang tebal seperti kanvas tidak boleh dipakai
karena sulit menyerap uap.
7. Kain dapat dipakai untuk Sterilisasi uap dan EO
Kain campuran
Campuran katun dan plastik memperbaiki kemampuan
menghalangi bakteri dan air. Tetapi karena sering dicuci, menjadi kurang baik.
Bahan ini sesuai untuk Sterilisasi
uap dan EO.
Prosedur dan Langkah-langkah pengemasan
Prosedur
pengemasan harus mencakup:
1.
Nama
alat-alat yang akan dikemas
2.
Langkah-langkah
yang tepat untuk persiapan dan inspeksi alat-alat, sesuai instruksi produsen
dan spesifikasinya.
3.
Sesuaikan
dengan metode Sterilisasi yang
dipakai
4.
Tipe dan
ukuran alat-alat yang akan dikemas
5.
Penempatan
alat-alat yang tepat dalam kemasan
6.
Tipe dan
penempatan yang tepat indikator kimia external dan internal, sesuai dengan
kebijakan pengendalian mutu proses Sterilisasi
7.
Metoda atau
teknik mengemas. (Lihat Lampiran 5)
8.
Metoda
pemberian segel pada setiap kemasan
9.
Metoda dan
penempatan label untuk identifikasi isi kemasan
10.
Aplikasi
informasi untuk pengendalian mutu, seperti nomor lot, tanggal, dan identifikasi
pekerja yang menyiapkan
11.
Petunjuk
untuk penempatan kemasan di dalam mesin Sterilisasi
12.
Peringatan
mengenai waktu pengeringan, waktu pendinginan, dan penanganan setelah proses Sterilisasi.
13.
Informasi
mengenai aplikasi pelindung setelah proses Sterilisasi terhadap debu, uap,vermin, dsb.
14.
Petunjuk
untuk penempatan pada penyimpanan, atau untuk distribusi ketempat pemakaian.
15.
Informasi
untuk pemakai untuk mencegah kemungkinan kontaminasi, misalnya prosedur yang
tepat untuk penyimpanan dan penanganan kemasan steril; inspeksi segel, dan
metode yang tepat untuk membuka alat-alat steril.
E. Sterilisasi
Sterilisasi adalah proses membunuh segala bentuk kehidupan mikroorganisme yang ada
dalam suatu sampel, alat, atau lingkungan tertentu (Rahardjo, 2010). Sterilisasi
dapat membunuh semua bentuk mikroorganisme meliputi virus, jamur, parasit,
kista, bakteri, dan bagian bakteri seperti spora (Spicer, 2008). Sterilisasi
berbeda dengan Disinfeksi. Disinfeksi merupakan tindakan/upaya
untuk mendestruksi atau membunuh mikroba patogen dalam bentuk vegetatif dan
bukan spora bakteri. Metode Disinfeksi dapat dilakukan dengan
memanfaatkan bahan kimia atau secara fisik (Tortora et al., 2007; Bauman et
al., 2011). Berdasarkan daya hambat terhadap mikroorganisme, Disinfeksi
dibedakan menjadi tiga yaitu Disinfeksi tingkat tinggi, menengah,
dan rendah (Spicer, 2008).
Sterilisasi dapat dilakukan dengan tiga metode yaitu secara fisika, mekanik, dan
kimia. Sterilisasi secara fisika dilakukan dengan pemanasan dan
radiasi, Sterilisasi mekanik dilakukan dengan filtrasi, sedangkan Sterilisasi
kimia dilakukan dengan cairan disinfektan (Goering et al., 2008; Spicer, 2008;
Levinson, 2010).
1) Sterilisasi Fisika
a)
Pemanasan
Sterilisasi panas bekerja dengan prinsip mendenaturasi protein sel dan asam nukleat
serta merusak membran sel. Sterilisasi panas dapat dilakukan
dengan tiga cara yaitu panas basah (merebus dan autoklaf), panas kering, dan
pasteurisasi (Madigan dan Martinko, 2006; Bauman et al., 2011). Sterilisasi panas merupakan Sterilisasi yang dianggap paling
efektif, tetapi kelemahannya tidak bisa diaplikasikan pada zat aktif yang tidak
tahan panas/rusak karna panas.
Sterilisasi panas basah dengan merebus pada suhu 100°C selama 2-3 menit dapat
membunuh semua bakteri kecuali bentuk spora. Agar dapat membunuh spora,
diperlukan suhu yang lebih tinggi. Untuk itu digunakan teknik Sterilisasi
panas basah bertekanan dengan autoklaf. Penguapan dengan autoklaf dapat lebih
cepat membunuh bakteri karena uap dapat menyebarkan panas ke semua bagian
tabung Sterilisasi. Uap dipertahankan selama 15 menit pada tekanan 15
lb/sq di atas tekanan atmosfer untuk mencapai suhu 121°C sehingga dapat
membunuh spora (Tortora et al., 2007; Bauman et al., 2011).
Sterilisasi panas kering dilakukan untuk bahan yang harus tetap kering dengan oven
listrik untuk mengedarkan panas. Karena panas kurang efektif untuk bahan
kering, dibutuhkan suhu 160-170°C dengan waktu 1 jam atau lebih untuk proses Sterilisasi (Brooks et al., 2008; Goering et al., 2008). Umumnya Sterilisasi panas dilakukan pada jenis minyak, serbuk yang
tidak stabil terhadap uap air, dan alat-alat gelas ukur yang tidak digunakan
untuk pengukuran (Bukan alat ukur).
b)
Pasteurisasi
Pasteurisasi digunakan untuk Sterilisasi larutan
seperti susu pada suhu 62,8-65,6°C selama 30 menit atau pada suhu 71,7°C selama
15 detik dengan segera diikuti pendinginan pada suhu di bawah 10°C. Tindakan
ini ditujukan untuk menekan pertumbuhan bakteri. Sterilisasi larutan
digunakan untuk membunuh sel vegetatif dalam susu tetapi tidak untuk mencapai
keadaan steril (Madigan dan Martinko, 2006; Levinson, 2010).
c)
Radiasi
Radiasi dapat menggunakan sinar ultraviolet (UV)
dan sinar-X.
Sterilisasi radiasi dibagi menjadi dua
:
a. Radiasi elektromagnetik (EM) adalah Sterilisasi menggunakan sinar
ultraviolet (UV). sinar UV ini memotong DNA mikroorganisme sehingga ekspresi
DNA tidak terjadi. keterbatasannya Sterilisasi cara ini hanya bisa
bekerja pada permukaan, tidak bisa menembus bahan padat. Aktivitas antimikroba untuk membunuh mikroorganisme yang ditransmisikan
melalui udara membutuhkan sinar-UV dengan panjang gelombang 250 sampai 260 nm.
b.
Radiasi pengion adalah metode Sterilisasi yang
menggunakan sinar gamma untuk merusak DNA mikroorganisme, kelebihannya bisa
menembus zat padat. Sinar-X memiliki kekuatan penetrasi
lebih kuat dibandingankan sinar-UV dan dapat menyebabkan perubahan DNA sehingga
terjadi mutasi dan kematian sel (Bauman et al., 2011).
2) Sterilisasi Mekanik
Sterilisasi secara mekanik dilakukan dengan cara filtrasi. Filtrasi digunakan untuk
mengeluarkan cairan atau gas melalui suatu bahan penyaring yang memiliki
pori-pori kecil untuk menahan mikroorganisme dengan ukuran tertentu. Saringan
akan tercemar, sedangkan cairan atau gas yang melaluinya akan steril (Goering
et al., 2008). Filtrasi biasanya menggunakan nitroselulosa dengan ukuran
pori-pori 0,22 µm. Ukuran ini hanya akan menjaring semua bakteri dan spora
sehingga cairan atau gas yang disaring masih mengandung mikoplasma dan virus
(Tortora et al., 2007; Spicer, 2008).
3)
Sterilisasi Kimia
Sterilisasi kimia dengan disinfektan bekerja dengan tiga macam mekanisme yaitu
merusak membran atau dinding sel, memodifikasi protein, atau memodifikasi asam
nukleat (Brooks et al., 2004; Levinson, 2010).
a) Merusak membran atau dinding sel
Membran sel bekerja sebagai sawar yang selektif
yaitu memungkinkan beberapa zat terlarut untuk melewatinya dan menahan zat
lainnya. Senyawa yang ditranspor secara aktif melalui membran akan
terkonsentrasi dalam sel. Membran juga merupakan tempat enzim yang terlibat
dalam biosintesis komponen selubung sel. Zat yang terkumpul di permukaan sel
dapat mengubah sifat fisika dan kimia membran. Hal ini menyebabkan membran
tidak dapat berfungsi dengan normal sehingga akan membunuh atau menghambat sel
(Bauman et al., 2011).
Dinding sel bekerja sebagai struktur pemberi bentuk
sel dan melindungi sel terhadap lisis osmosis. Oleh karena itu, berbagai agen
yang menghancurkan dinding atau mencegah sintesis normalnya dapat menimbulkan
lisis sel (Brooks et al., 2008).
Beberapa disinfektan yang bekerja dengan prinsip
merusak membran dan dinding sel antara lain:
1)
Alkohol
Etanol digunakan untuk membersihkan kulit sebelum
imunisasi dan pungsi vena. Etanol akan lebih optimal apabila dicampur air dan
paling baik dalam konsentrasi 70% (Goering et al., 2008, Levinson, 2010).
2)
Deterjen
Deterjen merupakan senyawa organik yang dapat
berikatan dengan air dan molekul organik non-polar. Molekul deterjen memiliki
satu ujung hidrofilik yang dapat bercampur dengan air dan satu ujung hidrofobik
yang dapat menempel pada lemak di membran sel organisme. Ikatan tersebut akan
menyebabkan membran sel menjadi rusak (Levinson, 2010).
3)
Fenol
Fenol merupakan disinfektan tingkat menengah dan
rendah yang dapat mendenaturasi protein dan merusak membran sel (Bauman et al.,
2011).
b) Memodifikasi protein
Protein memiliki bentuk tiga dimensi dan
berlipat-lipat yang ditentukan ikatan disulfida kovalen intramolekul dan
sejumlah ikatan nonkovalen seperti ikatan ion, hidrofobik, dan hidrogen. Ikatan
tersebut mudah terganggu oleh sejumlah agen kimia dan fisik yang menyebabkan
terjadi perubahan bentuk protein dan protein menjadi tidak berfungsi. Adanya
perubahan bentuk dan hilangnya fungsi protein disebut sebagai denaturasi
(Brooks et al., 2008).
Beberapa disinfektan yang bekerja dengan prinsip
memodifikasi protein antara lain:
1)
Klorin
Klorin dikenal sebagai deodoran dan disinfektan
yang sangat baik untuk pemurnian air minum dan kolam renang. Senyawa hipoklorit
paling banyak dipakai untuk tujuan Disinfeksi dan menghilangkan bau di
rumah dan rumah sakit. Di rumah sakit klorin dipakai untuk Disinfeksi ruangan,
permukaan, serta alat non-bedah. Klorin berikatan dengan gugus sulfhidril pada
protein sehingga menyebabkan denaturasi protein (Levinson, 2010).
2)
Iodin
Iodin dalam air maupun dalam alkohol merupakan
antiseptik kulit paling efektif digunakan dalam tindakan kesehatan termasuk
sebelum proses pembedahan. Iodin merupakan oksidan yang menginaktivasi
sulfhidril pada enzim (Tortora et al., 2007).
3)
Derivat logam berat
Logam berat berperan sebagai antimikroba karena
dapat mempresipitasi enzim atau protein esensial lain dalam sel dengan cara
berikatan dengan gugus sulfhidril. Logam berat yang umum digunakan adalah Hg,
Ag, As, Zn, dan Cu. Logam berat yang paling sering digunakan dalam bidang
kesehatan dan memiliki aktivitas antibakteri paling besar adalah merkuri dan
silver (Tortora et al., 2007).
4)
Hidrogen peroksida
Hidrogen peroksida akan terurai menjadi air dan
oksigen apabila dipanaskan. Selama pembentukan oksigen, dibentuk pula radikal
superoksida yang akan bereaksi dengan kompleks bermuatan negatif di dalam
protein yang selanjutnya akan menginaktivasi enzim. Hidrogen peroksida
mempunyai aktivitas spektrum luas melawan virus, bakteri, ragi, dan spora bakteri.
Aktivitas sporisidal memerlukan konsentrasi H lebih tinggi (10-30%) dan waktu
kontak yang lebih lama (Brooks et al., 2008).
5)
Formaldehid dan glutaraldehid
Glutaraldehid digunakan untuk Disinfeksi Endoskopi
dan peralatan bedah pada suhu rendah. Biasanya digunakan larutan 2O2
yanglutaraldehid 2% untuk mencapai aktivitas sporisidal. Formaldehid bersifat
bakterisidal, sporisidal, dan virusidal (Brooks et al., 2008; Goering et al.,
2008).
6)
Etilen oksida
Gas etilen oksida digunakan untuk Sterilisasi
alat kedokteran yang peka terhadap panas seperti plastik, karet, dan alat-alat
bedah (Goering et al., 2008, Spicer, 2008). Sterilisasi menggunakan gas etilen oksida, kelemahannya zat ini mudah terbakar,
bersifat mutagenik dan toksik, sehingga dikhawatirkan terdapat residu setelah Sterilisasi.
Pilihan Sterilisasi cara gas biasanya pilihan akhir bila zat tidak
tahan panas ataupun uap air.
7)
Asam dan basa
Asam dan basa kuat bekerja dengan cara
mendenaturasi protein. Asam lemah seperti asam benzoat, asam propionat, dan
asam sitrat digunakan pada makanan karena bersifat bakteriostatik (Levinson,
2010).
c) Memodifikasi asam nukleat
Sejumlah agen antimikroba bekerja dengan cara
merusak DNA. Berbagai agen pengalkil dan senyawa lain bereaksi secara kovalen
dengan basa pirin dan pirimidin sehingga bergabung dengan DNA atau membentuk
ikatan silang antaruntai. Lesi DNA yang diinduksi secara kimia akan membunuh
sel terutama dengan cara menganggu replikasi DNA (Brooks et al., 2008). Salah
satu disinfektan yang bekerja dengan cara memodifikasi DNA adalah kristal
violet (gentian violet) yang digunakan untuk antiseptik kulit (Bauman et al.,
2011).
§ Penyimpanan
dan Distribusi
Alat/bahan yang sudah disterilkan oleh petugas
kemudian disimpan di lemari penyimpanan alat steril dan di distribusikan ke
unit-unit yang membutuhkan alat/bahan dalam kondisi yang steril.
Dan melalui cara yang steril juga. Ini untuk tetap menjaga kualitas Sterilisasi alat.
§ Pencatatan
dan Pelaporan
Alat/bahan yang disterilkan di catat jumlah set nya,
berat alat, tanggal dan petugas/perawat yang mensterilkan di dalam buku
pencatatan dan pelaporan Sterilisasi.
§ Pembuangan
Limbah
Limbah atau buangan hasil proses Sterilisasi dibuang ke IPAL Rumah
Sakit atau
pelayanan kesehatan terkait.
Bab iii
penutup
Salah satu nilai penting dari Sterilisasi alat adalah untuk
menhindari infeksi nosokomial. Peran perawat dalam hal ini sangatlah besar. Sterilisasi
alat merupakan salah satu bagian strategi rumah sakit dalam pengendalian
infeksi nosokomial. Dengan pemahaman akan Sterilisasi dan Disinfeksi yang benar
maka keamanan pasien maupun petugas kesehatan akan terjamin.
Berbagai
langkah dan prosedur harus dipahami dengan benar agar dapat melakukan tindakan Sterilisasi
yang benar. Tak kalah pentingnya adalah dengan tetap mengikuti update keilmuan
yang terus berkembang. Dan memang Sudah sepantasnya kita terus belajar
meningkatkan keilmuan.
Daftar pustaka
Salawati, Liza. 2012. PENGENDALIAN INFEKSI NOSOKOMIAL DI RUANG
INTENSIVE CARE UNIT RUMAH SAKIT. JURNAL KEDOKTERAN SYIAH KUALA Volume 12 Nomor 1 April 2012. Hal
47-52.
Departemen Kesehatan Republik
Indonesia. 2009. Pedoman Instalasi Pusat Sterilisasi Di Rumah Sakit. Jakarta.
EmoticonEmoticon